名稱PAS染色液（糖原染色液）/PASStainingSolution
試劑組分
試劑（A）過碘酸溶液4℃避光
試劑（B）SchiffReagent4℃避光
試劑（C）蘇木素染色液RT避光
試劑（D）酸性乙醇分化液RT
【注】有效期12個月
自備材料
1、10%福爾馬林固定液
2、蒸餾水
3、乙醇
產品簡介
糖原染色是病理學中常規的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色液不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質，以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。
過碘酸（又稱高碘酸）是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的1，2-乙二醇基，使之變為二醛，醛與Schiff試劑能結合成一種品紅化合物，產生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細胞內其他物質，使用時應注意選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于過氧化，這是很關鍵的步驟。
本糖原PAS染色液的特點：采用特有配方技術，大大增強了染色效果；性能穩定，特異性強；操作簡捷，僅需1h左右。
使用參考
操作步驟（僅供參考）：
1、常規固定，常采用10%的福爾馬林，常規脫水包埋。
2、石蠟切片脫蠟入蒸餾水；冰凍切片直接入蒸餾水。
3、自來水沖洗2～3min，再用蒸餾水浸洗2次。
4、置于過碘酸溶液中，室溫放置5～8min，一般不宜超過10min。
5、自來水沖洗1次，再用蒸餾水浸洗2次。
6、樣本放入SchiffReagent，置于室溫陰暗處，浸染10～20min。
7、自來水沖洗10min。
8、樣本置于蘇木素染色液中，染細胞核1～2min。
9、酸性乙醇分化液分化2～5s。
10、自來水沖洗10～15min后，更換雙蒸水清洗，使其返藍。
11、逐級常規乙醇脫水。二甲苯透明，中性樹膠封固。
使用結果
PAS反應陽性物質>>紅色或紫紅色
細胞核>>藍色
細胞質>>深淺不一的紅色
備注：顏色深淺很大程度上取決于樣品在過碘酸溶液和SchiffReagent中作用時間的長短。
陰性對照(可選)：
1、對照切片可以用唾液，取唾液片（過濾后用）處理30～60min后，與其他切片共同入過碘酸溶液。結果應為陰性。
2、對照片可以淀粉酶，取淀粉酶1g于雙蒸水或PBS(pH5.3)100ml，處理30～60min后，與其他切片共同入過碘酸溶液。結果應為陰性。
3、如果對照片采用其自身樣本，對照片不經過碘酸溶液這一步，直接入SchiffReagent。染色結果：對照片呈陰性反應，無紫紅色顆粒。
注意事項
1、切片脫蠟應盡量干凈，否則影響染色效果。
2、過碘酸氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以18～22℃最佳。
3、過碘酸溶液和SchiffReagent應置于4℃密閉保存，使用時避免接觸過多的陽光和空氣。使用前，最好提前30min取出恢復到在室溫后，避光暗處使用。
4、酸性乙醇分化液應經常更換新液，其分化時間應該依據切片厚薄、組織的類別和酸性乙醇分化液的新舊而定，另外分化后自來水沖洗時間應該足夠。
5、在過碘酸溶液和SchiffReagent中作用時間非常重要，該依據切片厚薄、組織的類別等決定。
6、本染色液常用于常規組織切片染色，對于真菌、細胞、極其薄的切片，建議采購糖原PAS染色試劑盒（細胞真菌專用），因為其過碘酸溶液和蘇木素溶液濃度更低，不宜過染。
7、冷凍切片染色時間盡量要短。
8、為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。
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糖原PAS染色液
